Miftachurohman

Tahun ini Departemen Hama dan Penyakit Tumbuhan (HPT) Fakultas Pertanian UGM menyelenggarakan acara spesial, yaitu Reuni Akbar HPT Faperta UGM 2018. Acara ini diselenggarakan pada tanggal 6 oktober 2018 bertempat di Bulaksumur Hall, University Club UGM. Acara ini dihadiri oleh alumni Departemen HPT dari berbagai lintas angkatan dan juga strata sarjana, pensiunan dosen dan karyawan, serta tamu undangan.

Ada beberapa alasan yang menjadikan acara ini begitu spesial. Yang pertama, reuni ini merupakan acara yang baru pertama kali diselenggarakan oleh Departemen HPT Faperta UGM. Selaini itu, acara ini diikuti oleh alumni dari berbagai lintas strata dan juga lintas angkatan, mulai dari alumni S1, alumni S2, hingga alumni S3.

Acara ini menjadi lebih spesial karena juga bertepatan dengan momen pensiun dua guru besar dari Departemen HPt, yaitu  Prof. Dr. Ir. Bambang Hadisutrisno, DAA. dan Prof. Dr. Ir. Christanti Sumardiyono, SU. Oleh karena itu, juga banyak persembahan oleh beliau berdua sebagai kenang-kenangan dari para alumni.

Acara ini dipandu oleh MC yang juga spesial. Siapa mereka? Ada Bapak Sri Sukamto, Mbak Jatu Barmawati, dan juga Anita. Mereka merupakan para veteran-veteran dari departmen HPT (kecuali Anita).  Acara ini semakin meriah dengan iringan musik dari Raka and The Band serta Organ Tunggal Langganan Pak Ipik, yaitu Pak Lim.

Acara ini semakin dramatis ketika diakhir lagu persembahan dari Pak Arif Wibowo untuk Eyang (Red pak Bambang), tiba tiba mati lampu. Memang ini hanya settingan, karena selanjutnya Pak Arif menyanyikan lagu Happy Birthday yang juga dipersembahkan untuk  Eyang pula.

Sudah terbayang  serunya acara ini kan?

Bagi saya pribadi, ini merupakan momen yang sangat luar biasa. Sebagai panitia dalam reuni akbar (OTW Alumni), acara ini memberikan kesempatan untuk bertemu dengan sesepuh, kolega, dan bahkan adik-adik angkatan yang terlibat dalam kepanitiaan. Memang, tidak ada angkatanku yang datang ke acara ini, karena juga memang masih bisa dibilang baru menjadi alumni, bahkan saking sering ketemunya, ada juga yang terlibat kepanitiaan bareng.

Semoga acara Reuni ini dapat kembali di laksanakan di lain kesempatan. Semoga juga semakin banyak alumni lintas strata dan lintas angkatan yang turut hadir dalam acara ini selanjutnya.

LAPORAN PRAKTIKUM
PATOGEN TUMBUHAN
ACARA II
ISOLASI DAN IDENTIFIKASI JAMUR, BAKTERI SERTA VIRUS

Disusun oleh:
Nama : Miftachurohman
NIM : 12/334974/PN/12969

Asisten:
Erwin Najmudin
Niken R. Paramita

LABORATORIUM PENYAKIT TANAMAN TERPADU
JURUSAN PERLINFUNGAN TANAMANFAKULTAS PERTANIAN
UNIVERSITAS GADJAH MADA
YOGYAKARTA
2014

ACARA II
ISOLASI DAN IDENTIFIKASI JAMUR, BAKTERI SERTA VIRUS

 TUJUAN

1. 1. Mengetahui cara isolasi jamur dan bakteri patogen tumbuhan dari sampel tanaman sakit
   2. Mempelajari penularan virus secara mekanik
   3. Mempelajari gejala penyakit karena virus yang timbul pada beberapa tanaman inang

TINJAUAN PUSTAKA

Isolasi adalah cara untuk memisahkan atau memindahkan mikroba tertentu dari lingkungannya, sehingga diperoleh kultur murni atau biakan murni. Kultur murni ialah kultur yang sel-sel mikrobianya berasal dari pembelahan dari satu sel tunggal. Ada berbagai cara untuk mengisolasi bakteri dalam biakan murni yaitu, cara pengenceran, cara penuangan, cara penggesekan atau penggoresan, cara penyebaran, cara pengucilan 1 sel, dan cara inokulasi pada hewan. Masing-masing mempunyai kelebihan dan kekurangan (Waluyo, 2007).

Beberapa cara umum yang dapat dilakukan untuk mengisolasi mikroba antara lain untuk mengisolasi bakteri dapat dilakukan dengan cara goresan (streak plate), cara taburan atau tuang (pour palte), cara sebar (spread plate), cara pengenceran (dilution method), serta manipulator (the micro manipulator method). Metode pengenceran bertujuan untuk memperkecil atau mengurangi jumlah mikroba yang tersuspensi dalam cairan, dengan cara melakukan pengenceran bertingkat terhadap sampel air.Sedangkan metode tuang adalah suatu metode yang dilakukan dengan cara memasukkan sampel yang telah diencerkan terlebih dahulu ke dalam cawan petri, dan dituangi dengan medium (Lay, 1992).

Apabila ingin mendapatkan kultur murni suatu mikrobia yang digunakan adalah metode streak plate, karena hasil akhir metode ini adalah berupa kumpulan sel-sel yang semakin jarang pada ujung streak sehingga dapat diambil bakteri pada jumlah seluler (satu sel). Selain itu bakteri yang didapat seharusnya merupakan bakteri yang memang ingin dibiakkan di kultur tersebut dengan kata lain bukan bakteri kontaminan, sebab yang diambil/dicuplik adalah koloni bakteri yang berada di atas streak yang dibuat dan bukan di luar streak. Kelebihan metode ini adalah dapat segera diketahui adanya kontaminasi. Sedangkan kekurangannya metode ini sulit dilakukan dan hanya dapat digunakan untuk menumbuhkan bakteri aerob saja. (Burrrow,1959).

Tobacco Mosaic Virus merupakan salah satu virus penting yang banyak menyerang tanaman. Virus ini sering menyerang famili solanaceae. Dilapangan TMV dapat menular melalui alat-alat pertanian dan secara meknaik melalui gesekan tanaman sakit dan tanaman sehat. Selain itu, daya tahan yang lama di luar tanaman inang mengakibatkan TMV dapat bertahan dalam tanah dan akan menulari tanamanbaru melalui luka mekanik pada akar tanaman(Wilkinson, 2012).

Salah  satu penyakit  yang  disebabkan  oleh  cendawan adalah penyakit  layu fusarium  yang  disebabkan  oleh  cendawan Fusarium  sp.  Penyebaran cendawan Fusariumsangat  cepat  dan dapat  menyebar ke tanaman  lain  dengan cara menginfeksi akar  tanaman dengan menggunakan  tabung  kecambah atau  miselium. Akar tanaman  dapat  terinfeksi  langsung  melalui  jaringan  akar,  atau  melalui  akar lateral  dan melalui  luka-luka, yang kemudian menetap  dan  berkembang  di berkas  pembuluh.  Setelah  memasuki  akar  tanaman,  miselium  akan berkembang  hingga  mencapai jaringan  korteks  akar.  Pada  saat  miselium cendawan  mencapai  xylem,  maka  miselium  ini  akan  berkembang  hingga menginfeksi  pembuluh  xylem.  Miselium  yang  telah  menginfeksi  pembuluh xylem, akan terbawa ke bagian lain tanaman sehingga mengganggu peredaran nutrisi  dan  air  pada  tanaman  yang  menyebabkan  tanaman  menjadi  layu (Semangun,  2005). Cendawan  Fusarium  tersebut  membentuk  polipeptida, yang  disebut  likomarasmin yang  dapat  mengganggu  permeabilitas  membran plasma dari tanaman (Chang et al.,, 2010).

Ralstonia solanacearum berkembang di dalam jaringan tanaman setelah melalui  bagian  interseluler  tanaman  dengan  bantuan  angin  dan  lubang  alami, misalnya stomata. Secara alami, patogen ini menginfeksi akar dengan kisaran inang yang luas dan secara agresif mengkolonisasi jaringan xilem, menyebabkan layu  letal  yang  diketahui  sebagai  penyakit  layu  bakteri  (Machmud and Suryadi, 2008).

METODOLOGI PRAKTIKUM

Praktikum Patogen Tumbuhan Acara II dengan judul Isolasi Jamur, Bakteri dan Virus dilaksanakan pada tanggal 10 Oktober 2014 di Laboratorium Penyakit Tanman Terpadu Jurusan Hama dan Penyakit Tumbuhan, Fakultas pertanian, Universitas Gadjah Mada, Yogyakarta. Bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah sampel tanaman tomat yang terkena penyakit layu bakteri akibat Ralstonia solanacearum dan Fusarium oxysporum, sampel tanaman tembakau yang sakit oleh Tobacco Mosaic Virus, Kloroks, carborundum, media NA dan PDA, tanaman cenopodium, air steril, serta buffer fosfat. Alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah cawan Petridis, jarum oose, tisu, Bunsen, pisau, , timbangan, mortar, dan alcohol.

Pada isolasi bakteri, langkah kerja yang dilakukan adalah batang tomat yang bergejala penyakit layu bakteri yang disebabkan oleh Ralstonia solanacearum dibersihkan kulitnya, kemudian didisinfeksi menggunakan alcohol. Kemudian batang tomat dipotong kecil-kecil dan dimasukkan kedalam tabung reaksi yang berisi air steril. Kmudian tabung reaksi digojok hingga suspense menjadi homogen. Setelah homogeny, air suspense bakteri kemudian di oleskan(streak)ke medium NA. Masing-masing petridish di beri label sesuai dengan ulangan.

Pada isolasi jamur, langkah kerja yang dilakukan adalah batang tanaman tomat yang bergejala layu akibat jamur fusarium dipoton-potong kecil pada pangkal batangnya(antara batang yang sakit dan batang yang sehat). Hasil potongan-potongan batang tersebut kemudian dimasukkan ke dalam kloroks selama kurang lebih dua menit. Setelah dimasukkan ke dalam kloroks,kemudian dimasukkan ke dalam air steril. Kemudian batang tersebut di masukkan ke dalam mediam PDA. Masing-masing petridish di beri label sesuaid dengan ulangan.

Pada inokulasi virus TMV, daun tanaman tembakau yang bergejala sakit akibat TMV di timbang seberat satu gram. Kemudian daun tersebut di gerus hingga halus dengan ditambahi buffer fosfat secukupnya. Setelah halus, air gerusan tersebut kemudian di saring menggunakan kapas. Setelah itu, daun tanaman chenopodium diolesi dengan karborundum. Kemudian air gerusan daun tembakau tersebut dioleskan kepermukaan daun hingga merata. Ditunggu hingga daun mongering. Setelah daun mongering, kemudian daun tersebut disemprot dengan menggunakan air steril hingga karborundum yang ada di daun tidak tersisa. Masing-masing daun diberi label sesuai dengan ulangan.

HASIL DAN PEMBAHASAN

Salah satu tahapan dalam postutal Koch untuk membuktikan bahwa jasad yang ada dalam tumbuhan yang sakit tersebut merupakan penyebab penyakit, diperlukan adanya isolasi penyakit serta inokulasi . Isolasi ini dilakukan menumbuhkan penyebab penyakit pada biakan murni. Inokulasi dilakukan agar dapat mengetahui apakah biakan murni hasil isolasi tersebut merupakan sumber penyakit yang sama atau bukan. Dalam praktikum ini, dilakukan isolasi terhadap organisme yang menyebabkan penyakit layu pada tomat, serta inokulasi penyakit kuning pada tembakau.

Organisme sasaran dalam isolasi ini adalah bakteri Ralstonia solanacearum dan jamur Fusarium oxysporum yang menyebabkab penyakit layu bakteri pada tanaman tomat. Selain itu, juga akan dilakukan isolasi virus TMV yang menyerang tanaman tembakau ke tanaman Chenopodium sebagai tanaman indicator.

Ralstonia solanacearum

Pengamatan mikroskopis bakteri R. solanacearum

Sumber: Dokumen pribadi. Perbesaran 10×40

Nama penyakit            : Layu bakteri pada tanaman tomat

Nama patogen             : Ralstonia solanacearum

Nama inang                 : Solanum lycopersicum

Isolasi bakteri pathogen Ralstonia solanacearum diperoleh dari pangkal batang tanaman tomat yang terinfeksi penyakit layu bakteri. Hasil  pengamatan  akar  dan  batang  secara  visual menunjukkan  adanya  nekrotik  pada  jaringan  pembuluh pada  akar  dan  batang  yang  ditandai  warna  cokelat  sampai hitam sepanjang jaringan kayu dan kambium. Gejala ini sebagai bentuk serangan dan perkembangan bakteri patogen di  dalam  jaringan   pembuluh  kayu  dalam  bentuk  massa bakteri (Kelman, 1953)

Hasil identifikasi gejala penyakit layu bakteri tomat yang didapatkan, merupakan analisa awal dari karakterisasi bakteri  patogen,  dan  untuk  mengetahui  bakteri  patogen sebagai  penyebab  penyakit  layu  bakteri  selanjutnya dilakukan  isolasi  dan  pengamatan  morfologi  bakteri patogen seperti berikut ini. Hasil  isolasi  bakteri  patogen  pada  medium  PDA menunjukkan bahwa koloni bakteri berbentuk tidak teratur, putih dan fluidal. Hal ini sesuai dengan yang diutarakan oleh (Denny at al, 2001).

Hasil  isolasi  dan  pengamatan  morfologi  bakteri patogen  merupakan  karakterisasi  awal  dari  R. solanacearum yang diduga sebagai bakteri patogen penyebab  penyakit  layu  bakteri  tomat.  Selanjutnya  untuk memastikan  isolat  bakteri  patogen  yang  diuji  sebagai  R. solanacearum yang  dapat  menginfeksi  tomat,  maka  perlu dilakukan  pengujian  patogenisitas yang dilakukan pada acara praktikum berikutnya.

solanacearum bersifat Gram negatif, berbentuk batang dengan ukuran 0,5 µmx 1,5 µm, dapat bergerak dengan satu atau beberapa flagela,aerobik, dapat mereduksi nitrat dan  memproduksi  amonia.  Bakteri  ini  diklasifikasikan  menjadi Ras berdasarkan perbedaan kisaran inang dan Biovar  berdasarkan sifat biokimia (penggunaan  sumber  karbon).  Karakteristik  lain  adalah  tidak membentuk  pigmen  pendar  fluor,  katalase  dan  kovac’s oksidase  positif, kemoorganotrof,  tidak  mampu  tumbuh  pada  suhu  4o C  atau  40oC,  tumbuh  pada medium  yang  mengandung  1%  NaCl,  tetapi  tidak  tumbuh pada  medium  yang mengandung  2%  NaCl  (Denny and Hayward,  2001).  Dari deskripsi diatas menunjukkan bahwa bakteri yang diidentifikasi dalam praktikum ini adalah bukan dari bakteri R.  solanacearum. Namun, bakteri yang diidentifikasi jika dilihat dari koloninya merupakan bakteri R.  solanacearum.

Gejala layu pada tanaman disebabkan bakteri ini menyerang sistem vascular, terutama pada tanaman herbaceus. Sistem transportasi ait dan nutrien diblok dalam pembuluh  xylem sehingga tanaman kekurangan air dan nutrisiahirnya mengakibatkan layu atau kadang – kadang kerdil. Oleh karena itu terjadinya layu mungkin bukan disebabkan secara langsung oleh toksin bekteri, tetapi karena pertumbuhan bakteri secara masif dalam  xylem dan produksi lender polisakarida ekstraseluler yang menyumbat sistem vascular. Koloni bakteri ini banyak di jumpai  dalam xylem baik pada bagian batang, akar atau tangkai. Masa inkubasi  R. solanacearum atau waktu antara inokulasi dan munculnya gejala lebih lama dibandingkan penyakit bakteri lain, sering lebih dari dua minggu.

Dalam isolasi bakteri, batang tanaman tomat setelah dikuliti akan didisinfeksi. Hal ini dialkukan untuk menghindari kontaminasi terhadap patogen non target. Pembuatan suspense dimaksudkan karena isolasi pada bakteri ini akan dilakukan dengan cara streak . Kelebihan metode ini adalah dapat segera diketahui adanya kontaminasi. Selain itu, alat-alat yang digunakan dalam isolasi ini harus di sterilisasi dulu utnuk menghindari kontaminasi.

Fusarium oxysporum

Pada isolasi jamur, batang tomat yang sudah dipotong-potong dimasukkan ke dalam kloroks. Hal ini bertujuan agar batang tomat menjadi steril dari jamur non target. Penggunaan kloroks dilakukan karena kloroks digunakan untuk mendisinfeksi pada jaringan yang tebal, seperti batang tomat tersebut. Sehingga jasad-jasad sekunder dapat dibersihkan. Batang diambil antata batang yang sehat dan batang yang sakit. Hal ini dilakukan agar jamur tersebut masih mendapatkan nutrisi dari jaringan tanaman yang sehat.

Nama patogen : Fusarium oxysporum

Nama inang     : Solanum lycopersicum

Pengamatan secara mikroskopis koloni F. oxysporum dilakukan dengan menggunakan mikroskop menggunakan biakan murni hasil isolasi. Pengamatan mikroskopis dilakukan  secara  langsung  dengan  melihat  perkembangan masing-masing koloni yaitu  mulai  dari diameter  koloni, warna  koloni, miselium udara, dan profil koloni.Hasil pengamatan isolatisolat Fusarium sp secara mikroskopis adalah sebagai berikut:

Pengamatan mikroskopis F. oxysporum

Sumber: Dokumentasi pribadi. Perbesaran 10×40

Hasil  pengamatan  menunjukkan bahwa isolat  yang berhasil  diisolasi dapat  diidentifikasi  berdasarkan  karakter  mikroskopis  yang  dimunculkan, antara  lain  diameter  koloni,  warna  koloni,  miselium  udara  dan  profil  koloni. Diameter koloni isolat berpengaruh pada proses pembentukan konidia, yang  pada  akhirnya  juga  akan  mempengaruhi  tingkat  perkembangan cendawan Fusarium sp. Pertumbuhan koloni isolat cendawan berikutnya akan tetap  terjadi  meskipun  pertumbuhannya  lambat,  hal  ini  dikarenakan  konidia merupakan  alat  perkembangan  pada  kelas  Deuteromycetes  yang  dihasilkan secara  aseksual,  sehingga  jumlahnya  menentukan  perkembangan  pada generasi berikutnya, dan dalam kondisi yang menguntungkan jumlah konidia cenderung  berbanding  lurus  dengan  laju  perkembangan cendawan Fusarium (Burnett and Hunter, 1988).

Penampakan warna koloni isolat Fusarium sp pada masing-masing kelompok  praktikum   berbeda-beda.  Perbedaan  warna koloni  isolat  ini didasarkan  pada  warna  yang  muncul  pada  bagian  dasar  koloni  dan  bagian permukaan atas koloni. Warna koloni  yang  tampak adalah  krem  halus,  ungu,  merah  jambu, putih  seperti  kapas,  putih  krem.

Menurut Semangun (2001), pigmen hifa Fusarium sp umumnya bervariasi, berpigmen hialin  (tidak  berwarna),  jika  berwarna  berarti  jamur  tersebut  berpigmen, umumnya adalah pigmen melanin  yang terikat pada dinding sel hifa.  Dalam Sastrahidayat (1989), jamur yang ditumbuhkan pada medium PDA mula-mula miselium berwarna putih, semakin tua warna menjadi krem atau kuning pucat, dalam  keadaan  tertentu  berwarna  merah  muda  agak ungu dengan miselium bersekat  dan  membentuk  percabangan.  Pengaruh  cahaya  terhadap pertumbuhan  hifa  vegetatif  jamur  biasanya  berupa  penghambatan  ataupun pemicuan  pertumbuhannya  sehingga  cahaya  dapat  berpengaruh  pada konsentrasi produksi pigmen dan pertumbuhan hifa. Secara umum cendawan yang ditumbuhkan pada kondisi terang terus akan mempunyai miselium udara yang  lebih  banyak  dibandingkan  pada  kondisi  yang  lain.  Hal  ini  disebabkan adanya sifat jamur yang tumbuh mengikuti arah cahaya (fototropi). Secara umum, isolat Fusarium sp secara  mikroskopis  memiliki  bentuk  mikrospora  ovoid yang umumnya  memiliki  0-1  sekat sedangkan bentuk  mikrospora umumnya panjang ujungnya  meruncing dan memiliki  2-6 sekat. Pengamatan isolat jamur Fusarium sp secara mikroskopis adalah dengan mengamati ukuran dan bentuk konidia/spora isolat,dan kerapatan spora Fusarium sp. Bentuk makrokonidia  dan  mikrokonidianya  secara  umum  adalah sama  yaitu berbentuk  ovoid. (mikrokonidia) dan  berbentuk memanjang dengan ujung meruncing (makrokonidia).

Dalam Domsch et  al.,  (1993),  makrokonidium  berbentuk  gelendong,  lonjong,  ujung  tajam, mempunyai 3-5 sekat, dan ukuran sporanya [(20-27) – (46-60) x (3,5-4,5)] µm. Mikrokonidia tersusun  1  sel,  transparan,  tersusun  membentuk  rantai  basipetal  yang  panjang.  Menurut Agrios (1996) bahwa mikrokonidium mempunyai satu atau dua sel, terdapat dalam jumlah yang banyak, dan sering dihasilkan pada semua kondisi. Jenis spora ini banyak dijumpai di dalam  jaringan  tanaman  terinfeksi.  Sementara  itu,  makrokonidium  mempunyai dua sampai lima sel dan berbentuk lengkung. Jenis spora ini umumnya banyak dijumpai di permuakaan tanaman yang mati karena infeksi jamur ini.

Cendawan  Fusarium oxysporum  mempunyai  3  alat  reproduksi,  yaitu mikrokonidia  (terdiri  dari  1-2  sel),  makrokonidia  (3-5  septa),  dan klamidospora  (pembengkakan  pada  hifa).  Makrokonidia  berbentuk melengkung, panjang dengan ujung yang mengecil dan mempunyai satu atau tiga buah sekat. Mikrokonidia merupakan konidia bersel 1 atau 2, dan paling banyak  dihasilkan  di  setiap  lingkungan  bahkan  pada  saat  patogen  berada dalam  pembuluh  inangnya.  Makrokonidia  mempunyai  bentuk  yang  khas, melengkung seperti bulan sabit, terdiri dari 3-5 septa, dan biasanya dihasilkan pada  permukaan  tanaman  yang  terserang  lanjut.  Klamidospora  memiliki dinding  tebal,  dihasilkan  pada  ujung  miselium  yang  sudah  tua  atau  didalam makrokonidia, terdiri dari 1-2 septa dan merupakan fase atau spora bertahan pada  lingkungan  yang  kurang  baik. Miselium yang dihasilkan oleh cendawan patogen penyebab penyakit layu  ini  mulanya  berwarna  putih  keruh,  kemudian  menjadi  kuning  pucat, merah muda pucat sampai keunguan(Susetyo, 2010).

Cendawan ini tumbuh  dari  spora  dengan  struktur yang menyerupai benang,  ada  yang  mempunyai  dinding  pemisah  dan  ada  yang  tidak.  Benang secara  individu  disebut  hifa,  dan  massa  benang  yang  luas  disebut  miselium. Miselium  adalah  struktur  yang  berpengaruh  dalam  absorbsi  nutrisi secara terus-menerus  sehingga  cendawan dapat  tumbuh  dan  pada  akhirnya menghasilkan  hifa  yang  khusus  menghasilkan  spora  reproduktif  (Foth,  1991 cit. Saragih  2009).  Miselium terutama  terdapat  di  dalam  sel  khususnya  di dalam  pembuluh,  juga  membentuk  miselium  yang  terdapat  di  antara  sel-sel, yaitu  di  dalam  kulit  dan  di  jaringan  parenkim  di  dekat  terjadinya  infeksi. Fusarium hidup sebagai parasit dan saprofit pada berbagai tanaman terutama pada bagian  pembuluhnya,  sehingga  tanaman  menjadi  mati  karena  toksin (Sastrahidayat, 1989).

Stadium terakhir merupakan stadium  yang tahan pada segala cuaca. Cendawan menginfeksi akar terutama melalui luka, menetap dan berkembang di berkas pembuluh. Setelah jaringan pembuluh mati dan keadaan udara  lembab,  cendawan  membentuk  spora  yang  berwarna  putih  keunguan pada  akar  yang  terinfeksi.  Penyebaran spora dapat  terjadi  melalui  angin,  air pengairan dan alat pertanian (Anonim, 2009).

Fisiologi  dari  jamur  Fusarium sp  yaitu  bermula  dari  adanya pembelahan  reduksi  dan  penentuan  jenis  kelamin  inti yang akan  terjadi jika zigot  telah  mengalami  waktu  istirahat.  Dari  zigot  itu  tumbuh  suatu  benang dengan  sporangium  pada  ujungnya.  Sporangium  ini  berlainan  dengansporangium  biasa,  sporangium  ini  hanya  mempunyai  satu  inti  saja,  sebagian bersifat  positif  (+)  dan  sebagian  bersifat  negatif (-).  Miselium  yang  tumbuh dari spora ini hanya mempunyai inti yang sama jenis kelaminnya, oleh sebab itu spora tadi sebagian akan menjadi miselium positif (+) dan negatif (-). Pada marga  ini  umumnya  sporangiumnya  memiliki  banyak  spora  akan  tetapi terdapat juga sporangium yang hanya mengandung sedikit spora, bahkan ada yang  setiap  sporangium  yang  hanya  mengandung  satu  inti  saja  yang dindingnya berdekatan dengan dinding sporangium (Anonim, 2009).

Cendawan Fusarium sp mengalami 2 fase dalam siklus hidupnya yakni patogenesa dan saprogenesa. Patogen ini hidup sebagai parasit pada tanaman inang  yang  masuk  melalui  luka  pada  akar  dan  berkembang  dalam  jaringan tanaman  yang  disebut  sebagai  fase  patogenesa  sedangkan  pada  fase saprogenesa  merupakan  fase  bertahan  yang  diakibatkan  tidak  adanya  inang, hidup sebagai saprofit dalam tanah dan sisa-sisa tanaman dan menjadi sumber inokulum  untuk  menimbulkan  penyakit  pada  tanaman  yang  lain.  Agrios (1997)  dalam Susetyo  (2010),  mengemukakan  bahwa  patogen  ini  dapat menimbulkan  gejala  penyakit  karena  mampu  menghasilkan  enzim,  toksin, polisakarida dan antibiotik dalam jaringan tanaman. Cendawan mengadakan infeksi pada akar terutama melalui luka-luka. Bila  luka  telah  menutup,  patogen  berkembang  sebentar  dalam  jaringan parenkim,  lalu  menetap  dan  berkembang  dalam  berkas  pembuluh. Huda (2010) menyebutkan  bahwa cendawan  Fusarium  tidak  dapat  menginfeksi batang  atau  akar-rimpang  meskipun  bagian  ini  dilukai.  Nematoda (Radopholus  similis)  membantu  dalam  infeksi  Fusarium  sp.  Penularan penyakit  melalui  bibit  terinfeksi,  pemindahan  bibit,  angin,  air,  tanah terinfestasi, permukaan air drainase, pembubunan, luka karena serangga, alat pertanian,  dan  lain-lain  (Booth,  1985  dan  Semangun,  2001).  Maria  et  al (2004) cit.

Winarsih  (2007)  menerangkan  bahwa  inokulum  patogen  dapat masuk  melalui  akar  dengan  penetrasi  langsung  atau  melalui  luka.  Di  dalam jaringan  tanaman,  patogen  dapat  berkembang  secara  interseluler  maupun intraseluler.  Klamidospora  dapat  berkecambah  bila  ada  rangsangan  eksudat akar  yang mengandung gula dan asam amino, juga dapat dirangsang dengan penambahan  residu  tanaman  ke  dalam  tanah .  Klon tanaman yang rentan tidak dapat ditanam kembali hingga 30 tahun pada tanah yang  sudah  terinfeksi Fusarium sp.  Di  dalam  tanah,  cendawan Fusarium sp dapat  bertahan  sebagai  parasit  pada  tanaman  gulma  yang  bukan  inangnya. Ujung akar atau bagian permukaan rizoma yang luka merupakan daerah awal utama dari infeksi (Sastrahidayat,  1986).

Gangguan  pada  jaringan  xylem,  tanaman  menunjukkan  gejala  layu, daun  menguning,  dan  akhirnya  mati.  Gejala  layu  seringkali  disertai  gejala klorosis  dan  nekrosis  pada  daun. Gejala  yang  terjadi  pada  tanaman cabai merah yang terserang penyakit layu fusarium adalah menguningnya daun dari tepi daun selanjutnya menjadi coklat dan mati secara perlahan hingga tulang daun.  Menguning  dan  matinya  daun-daun  dimulai  dari  daun  yang  lebih  tua. Hal ini disebabkan patogen menginfeksi tanaman melalui luka pada akar dan masuk  kedalam  jaringan  xylem  melalui  aktivitas  air  sehingga  merusak  dan menghambat  proses  menyebarnya  air dan  unsur  hara  keseluruh  bagian tanaman  terutama  pada  bagian  daun  yang  tua.

Tobacco Mosaic Virus (TMV)

Pada isolasi virus, digunakan tanamn Chenopodium amaranticolor karena tanaman ini adalah tanaman yang baik untuk digunakan sebagai tanaman indicator. Hal ini karena tanaman ini merupakan tanaman yang rentan. Pada tanaman C. amaranticolor, gejala lesion local biasanya berkembang dengan baik pada daun yang telah dewasa. Karborundum memiliki partikel yang kecil. Ketika dioleskan pada daun, maka daun akan mengalami luka-luka kecil, sehingga luka tersebut digunakan untuk jalan masuknya virus ke jaringan tanaman. Penggunaan buffer fosfat pada saat penggerusan adalah agar partikel virus tetap dapat virulen, karena penggerusan ini menyebabkan virus terdisleksi dari sel daun tembakau. Dalam praktikum ini, virus TMV diidentifikasi dengan melihat gejala yang tampak pada daun tembakau yang bergelaja mosaic.

Virus mosaik tembakau (Tobacco mosaic virus, TMV) adalah virus yang menyebabkan penyakit pada tembakau dan tumbuhan anggota suku terung-terungan (Solanaceae) lain. Gejala yang ditimbulkan adalahbercak-bercak kuning pada daun yang menyebar, seperti mosaik.

Tembakau virus mosaik memiliki tampilan seperti batang. kapsid adalah terbuat dari 2130 molekul protein mantel (lihat gambar ke kiri) dan satu molekul basa RNA genom 6.400 panjang. Protein mantel merakit diri ke dalam batang seperti struktur heliks (16,3 protein per helix putar) di sekitar RNA yang membentuk struktur loop jepit rambut (lihatmikrograf elektron di atas). Monomer protein terdiri dari 158 asam amino yang dirakit menjadi empat-alfa heliks utama, yang bergabung dengan loop terkemuka proksimal dengan sumbu virion tersebut. Virion ~ 300 nm panjang dan ~ 18 nm dalam diameter. microphotographs elektron negatif bernoda menunjukkan saluran batin yang berbeda ~ 4 nm. RNA terletak di radius ~ 6 nm dan dilindungi dari tindakan enzim seluler oleh mantel protein Ada tiga RNA nukleotida per monomer protein. X-ray difraksi serat struktur virus utuh berdasarkan kerapatan elektron 3,6 Å peta pada resolusi(Akin dan Nurdin, 2003).

Gejala yang disebabkan oleh virus mosaik tembakau (TMV) adalah agak tergantung pada tanaman inang dan dapat termasuk mosaik, bintik-bintik (gambar 1 dan 2), nekrosis (gambar 3 dan 4), pengerdilan, daun keriting, dan menguning dari jaringan tanaman. Gejala tersebut sangat tergantung pada umur tanaman terinfeksi, kondisi lingkungan, strain virus, dan latar belakang genetik dari tanaman inang, temperatur, kondisi cahaya, faktor gizi, dan stres air(Akin dan Nurdin, 2003)

Karena virus tidak memiliki metode aktif untuk masuk ke sel tanaman, mereka harus mengandalkan menyebabkan luka mekanis, perbanyakan vegetatif tanaman, mencangkok, biji, serbuk sari, dan sedang dilakukan pada bagian mulut serangga mengunyah. virus mosaik tembakau ini paling sering dimasukkan ke dalam tanaman melalui luka kecil yang disebabkan penanganan dan oleh serangga pencucuk penghisap bagian-bagian tanaman(Akin dan Nurdin, 2003).

Nama patogen : TMV (Tobacco Mosaik Virus)

Nama inang     : Nicotiana tabacum

KESIMPULAN

1. Isolasi adalah cara untuk memisahkan atau memindahkan mikroba tertentu dari lingkungannya, sehingga diperoleh kultur murni atau biakan murni.    Isolasi jamur dan bakteri dilakukan dengan cara mengambil jamur dan bakteri tersebut dari bagian tanaman yang menunjukkan gejala sakit kemudian ditumbuhkan kemedium untuk memeperoleh biakan murni.
2. Inokulasi virus dilakukan dengan cara mengekstraksi virus dari bagian tanaman yang menunjukkan gejala sakit   , kemudian ditularkan ke tanaman yang sehat.
3. Bakteri yang diidentifikasi dalam praktikum ini merupakan bukan bakteri dari R. solanacearum. Jamur yang diidentifikasi dalam praktikum ini adalah jamur F. oxysporum. Virus yang diidentifikasi secara visual dalam praktikum ini merupakan jenis virus TMV.

DAFTAR PUSTAKA

Agrios GN. 1996. Ilmu Penyakit Tumbuhan. Yogyakarta: Gadjah Mada University Press.

Akin, H.M. dan M. Nurdin. 2003. Pengaruh infeksi TMV (Tobacco Mosaic Virus) terhadap pertumbuhan vegetative dan generative beberapa varietas cabai merah (Capsicum annum l.). J. Hama dan Pneyakit Tumbuhan Tropika. 3:10-12.

Barnet  dan  Hunter.  1988. Illustrated  Genera  of  Imperfect  Fungi.  West  Virginia  : Burgress Publishing Company

Booth S. 1985. The Genus Fusarium. England. The Lavenham Press Ltd.

Burrow,W.1959.Textbook of Microbiology.W.B. Saunders Company:Philadelpia

Chang, T.H., Lin, Y.H., and Chen, K.S. 2014. Cell wall renforcement in watermelon shoot base related to its resistance to fusarium wilt caused by Fusarium oxysporum. Journal of Agriculture Science 1-10.

Denny,  T.P., and  A.C.  Hayward.  2001.  Ralstonia solanacearum. In: Schaad, N.W., J.B. Jones, and W. Chun.  Laboratory  Guide  for  Identification  of  Plant Pathogenic  Bacteria.  Third  Edition.  APS  Press, St.Paul Minnessota.

Domsch K.H., T.H Anderson. , W. Gams. 1993. Compendium of Soil Fungi. IHW-Velag I:-

Huda,  M.  2010.  Pengendalian  Layu  Fusarium  pada  Tanaman  Pisang  (Musa  paradisiaca L.)  secara  Kultur  Teknis  dan  Hayati.  Skripsi.  Fakultas  Pertanian.  Institut  Pertanian Bogor.

Kelman,   A.  1953.  The  bacterial  wilt  caused  by Pseudomonas  solanacearum.  A  Literature  review and Bibiography. Tech. Bull. N. Carolina

Lay, W. 1992. Mikrobiologi . Jakarta : Rajawali Pers.

Machmud, M. and Y. Suryadi. 2008. Detedtion and identification of Ralstonia solanacearum strains using the indirect Elisa technique. Indonesia Journal of Agriculture 1:13-21.

Saragih,  S.D.  2009.  Jenis-jenis  Fungi  pada  Beberapa  Tingkat  Kematangan  Gambut.  Skripsi. Fakultas Pertanian. Universitas Sumatra Utara.

Sastrahidayat, I. R. 1986. Ilmu Penyakit Tumbuhan. Usaha Nasional. Surabaya.

Semangun, H. 1996. Pengantar Ilmu Penyakit Tumbuhan. UGM Press. Yogyakarta.

Semangun, H. 2001. Pengantar Ilmu Penyakit Tumbuhan. Yogyakarta: Gajah Mada University Press.

Susetyo, Aryo Pratomo. 2010. Hubungan Keanekaragaman Cendawan Rizosfer Tanaman Pisang Anonim.  2009.  Hama,  Penyakit  Dan  Defisiensi  Pada  Tanaman  Cabai. http://indonesiachili.com/pestanddiseasesmanagement.htm. Diakses tanggal 1 Desember 2014.

Waluyo, L. 2007. Mikrobiologi Umum . Malang : UMM Press.

Wilkinson, L. 2012. The development of the virus concept as reflected in corpora on individual pathogens – Lesson of the plant viruses -Tobacco Mosaic Virus. Medical History 20: 111-134.

Winarsih, S.  2007. Pengaruh  bahan  organik  pada  pertumbuhan Gliocladium  virens dan  daya antagonisnya terhadap Fusarium oxysporum secara in-vitro. Jurnal Ilmu-Ilmu Pertanian Indonesia. 3:386 – 390